Инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота

ИНФЕКЦИОННЫЙ РИНОТРАХЕИТ КРУПНОГО РОГАТОГО СКОТА RHINOTRACHEITIS INFECTIOSA BOVUM (Infectious bovine Rhinotracheitis, Infectious necrotic rhinolracheitis, Red nose, Coital exantema, Infectious pustular vulvovaginitis — англ.;La Rhinotracheite infectiouse, Exanteme coital — франц.; Die infektiose Rhinotracheitis, Das Coitalexantem — нем.)

Инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота (инфекционный катар дыхательных путей, инфекционный вульвоваги-нит)-остро протекающая болезнь, проявляющаяся поражением органов дыхания, половых путей, конъюнктивы и центральной нервной системы.

География болезни. Инфекционный ринотрахеит крупного рогатого скота был диагностирован в 1950 г. Миллером (Miller, 1955) в США среди откормочного скота.

В 1954 г. Шредер и Мойс (Schroeder и Moys) отмечали вспышку болезни среди телят молочного стада в Калифорнии. Болезнь была описана под различными названиями. В 1955 г. по предложению Мак Керчера (McKercher) ее официально стали называть инфекционным ринотрахеитом.

В 1956 г. Мейдин и др. (Madin et al.) методом культуры ткани впервые выделили вирус и экспериментально воспроизвели болезнь. В настоящее время инфекционный ринотрахеит широко распространен в США, Канаде, Новой Зеландии, Африке, Японии, Австрии, Австралии, Италии и др.

В Советском Союзе заболевание, подобное инфекционному ринотрахеиту, было зарегистрировано Ф. М. Пономаренко (1940) и на основании клинических признаков и гистологических исследований описано как инфекционный катар верхних дыхательных путей.

Болезнь диагностирована среди племенного крупного рогатого скота по клиническим признакам, патанатомическим изменениям и результатам серологического исследования (Ю. В. Фомин, Г. А. Иванова и др., 1970). В. П. Назаров и А. С. Гришенкова установили ринотрахеит у импортированных животных. В 1969 г. от больных телят откормочного хозяйства был выделен в культурах клеток вирус и экспериментально воспроизведено заболевание различными способами заражения (Н. Н. Крюков, А. Л Семенихин, 3. Ф. Зудилина, 1970).

Возбудитель — ДНК-содержащий вирус, состоящий из нуклеоида, капсида и суперкапсидной оболочки. Исследованиями лабораторного штамма Оксфорд (Е. И. Скалинский, Г. А. Иванова) и полевых штаммов вирусов группы герпеса, выделенных в СССР (Л. Бодон, Н. Н. Крюков и др.), установлено, что по ультраструктурной организации вирус инфекционного ринотрахеита в общем не отличается от других представителей герпес-вирусов. Капсид вириона представляет сферическое тело с осями симметрии 5:3:2, его оболочка сформирована из 162 капсомеров (рис. 1). Супер-капсидная оболочка окружает нуклеокапсид. Общий диаметр ви-роспор с суперкапсидной оболочкой колеблется от 1400 до 2150 А.

Вирус чувствителен к эфиру, разрушается под действием трипсина, хорошо размножается в- первично трипсинизированных культурах клеток, приготовленных из разных тканей эмбриона крупного рогатого скота и взрослых животных с проявлением выраженного цитопатического эффекта. Вирус обладает способностью образовывать бляшки (негативные колонии) в культурах клеток под агаровым покрытием величиной до 7 мм.

Вирус инфекционного ринотрахеита не имеет антигенно различных вариантов. В антигенном отношении он отличается от вируса герпеса бычьего типа, но проявляет некоторое родство с вирусами ринопнев-монии лошадей в реакциях связывания комплемента и диффузионной преципитации в агаровом геле.

До недавнего времени инфекционный вульвовагинит считался самостоятельным заболеванием. Гиллес-пие и др. (Gillespie et al.) в 1958 г. установили, а позже другие исследователи подтвердили полную идентичность вируса инфекционного ринотрахеита (ИРТ) с вирусом инфекционного вульвовагинита (ИПВ). С этого времени принято обозначение возбудителя как ИРТ-ИПВ.

Устойчивость. Вирус ИРТ-ИПВ довольно устойчив во внешней среде. В материалах из органов и тканей он может сохраняться в течение 3-4 месяцев при 4°. Температура 56° инактиви-рует вирус в течение 4-20 минут. При температуре 37° вирус утрачивает инфекционность в течение 10 дней, при 22°- в течение 50 дней. Солнечные лучи инактивируют вирус за 48 часов. По данным Хагнефелда и др. (Hahnefeld et al., 1963) и собственным наблюдениям, глубокая заморозка вируссодержащего материала не снижает инфекционности после 3-6-кратного замораживания и оттаивания. Однако хранение вируса при минус 20° в течение шести месяцев приводит к снижению титра. В нативном виде вирус лучше сохраняется при минус 70°, не снижая титра в течение 6-7 месяцев. В лиофилизированном виде с различными наполнителями вирус может сохраняться продолжительное время без снижения активности. 5%-ный раствор формалина инактивирует вирус в течение одной минуты, растворы 1 : 500, 1 : 1000 и 1 : 5000 разрушают вирус соответственно через 24, 48 и 96 часов, 0,5%-ный раствор едкого натра-за 30 секунд. При рН 6,0-9,0 вирус не теряет своей активности и быстро инактивируется при рН 4,0-5,0. В 50%-ном растворе глицерина вирус сохраняется при температуре 4-5° в течение 280 дней.

Эпизоотология болезни. В естественных условиях к вирусу инфекционного ринотрахеита восприимчив крупный рогатый скот всех пород и возрастов. Лабораторные животные — морские свинки, крысы, новорожденные мышата, мыши, куры, куриные эмбрионы, однодневные цыплята — невосприимчивы к вирусу при различных методах заражения. Нанесение вируссодержащего материала на скарифицированную кожу, роговицу и введение в спинной мозг кролика приводит к образованию диффузного эритематозного дерматита, катарального конъюнктивита с изъязвлениями роговицы и менингоэнцефалиту (Ю. В. Фомин).

В организме естественно больных или экспериментально зараженных животных вирус локализуется в слизистой оболочке носовой полости, влагалища, в конъюнктиве, заглоточных миндалинах, в паренхиматозных органах и тканях мозга. Вирус ИРТ сравнительно легко передается аэрогенным путем, а вирус ИПВ — посредством контакта при случке с больным быком.

Заболевание чаще возникает в местах концентрации и скученного содержания крупного рогатого скота. Предрасполагающими факторами являются неблагоприятные воздействия условий среды, нарушение ветеринарных правил содержания и кормления животных.

Патогенез. Вирус ИРТ аэрогенно или путем контакта попадает на слизистую оболочку носовой полости, глаз, половых путей и размножается в чувствительных клетках. Затем с кровью разносится по организму, вызывая общую реакцию. Особенности проявления клинических синдромов болезни (респираторный, генитальный, поражение центральной нервной системы, слизистой глаз) зависят от локализации возбудителя. У стельных коров вирус может проникнуть через плаценту в плод и вызвать аборт.

Симптоматика. При респираторном синдроме инкубационный период в естественных условиях заражения вирусом ИРТ продолжается 3-7 дней. У экспериментально зараженных животных первые симптомы болезни проявляются через 1-7 дней, в зависимости от способа заражения.

Первым клиническим признаком болезни является повышение температуры тела. В этот период животные отказываются от корма, у них появляется сухой кашель, угнетенное состояние, из носовых полостей выделяется серозный, серозно-гнойный экссудат. Затем наблюдается слюнотечение, гиперемия и отечность слизистой оболочки носа и конъюнктивы, серозные выделения из глаз, которые, высыхая, превращаются в корочки в углах глаз. У лактирующих коров снижается удой на 50-60%- Летальность составляет 3-10% от числа заболевших.

При затяжном течении болезни и осложнении вторичной микрофлорой наблюдаются обильные гнойные выделения из носа, развиваются пневмония и бронхопневмония, дыхание становится затрудненным, животные худеют. Большинство животных через 14- 16 дней выздоравливает.

При генитальном синдроме клинические признаки характеризуются гиперемией слизистой влагалища, образованием узелков и пузырьков на поверхности вульвы. Позднее на наружных половых органах появляются многочисленные пустулы, которые, сливаясь, образуют темноватые пленки (псевдомембраны). При отделении пленок под ними обнаруживают язвы. В этот период течения болезни отмечается припухание вульвы, учащаются позывы к мочеиспусканию, животные часто переступают задними ногами и изгибают спину.

При баланопоститах на пенисе и припуции появляются пустулы, изъязвления, кровоизлияния, отечность и болезненность. Эти признаки можно обнаружить в течение трех месяцев.

У телят до 6-месячного возраста наблюдают менингоэнцефалит. Клинические признаки характеризуются повышением температуры тела, конъюнктивитом, манежными движениями, тремором мышц, возбуждением. Животные погибают на 4-5-е сутки после проявления признаков поражения нервной системы.

Аборты, вызываемые вирусом ИРТ-ИПВ, происходят на 67г- 8-м месяце беременности через 18-64 дня после заражения. В дальнейшем аборты не оказывают отрицательного влияния на воспроизводительные функции организма.

При коньюнктивальном синдроме наблюдают гиперемию, отечность слизистой оболочки, серозные, серозно-слизистые, а при осложнении микрофлорой — гнойные выделения. Животные могут болеть от нескольких дней до 3-4 недель.

Патологоанатомические изменения. При респираторном синдроме (ИРТ) изменения находят в верхнем отделе органов дыхания. Они характеризуются гиперемией и отеком слизистой оболочки носовых ходов и раковин с наличием небольшого количества серозного экссудата в полости носа. По данным Мак Керчера (1959), такие изменения бывают в тех случаях, когда болезнь заканчивается быстрым выздоровлением. В более тяжелых случаях воспалительный процесс распространяется на гортань и трахею. На интенсивно гиперемированных слизистых оболочках носа, гортани и верхней трети трахеи можно обнаружить точечные, полосчатые и разлитые кровоизлияния (Н. Н. Крюков, 1970; Г. А. Иванова, Ю. В. Фомин и др., 1970).

В носовой полости, гортани и частично трахее скапливается большое количество серозно-фибринозного экссудата, который образует ложную оболочку и может суживать просвет верхних дыхательных путей. После удаления экссудата на слизистой оболочке обнаруживают различной величины некротические участки. Экссудат находят в верхнечелюстной пазухе и полости небной кости, реже в просвете бронхов и бронхиол. Вокруг носовых отверстий образуются корочки засохшего экссудата. У животных светлой масти заметна гиперемия носового зеркала (красный нос). Заглоточные, бронхиальные и средостенные лимфатические узлы набухшие, на разрезе сочные, иногда с кровоизлияниями.

Кроме перечисленных патологоанатомических изменений наблюдают гиперемию и набухание слизистой оболочки конъюнктивы и третьего века, на которой иногда обнаруживают серый налет и очаги некроза.

Хагс и др. (Huges et al., 1964) при естественном и экспериментальном ринотрахеите наблюдали, кроме конъюнктивитов, кератиты и кератоконъюнктивиты. Однако эти данные не подтверждены Моханти и Лилли (Mohanty, Lillie, 1970) и Рознером (Rosner, 1968.)

Изменения в легких, сычуге и тонком отделе кишечника, обнаруживаемые при естественных вспышках болезни, не характерны для ринотрахеита и являются следствием секундарной микрофлоры или смешанной вирусной инфекции.

При генитальном синдроме (ИПВ) наблюдают гиперемию слизистой влагалища, единичные и сливные пустулы и очаги некроза, а на дне влагалища — скопление слизисто-гнойного экссудата (Кендрик и др., 1958; Рознер, 1968). У самцов аналогичные изменения находят на пенисе и препуции.

При абортах характерных макроскопических изменений нет. Кендрик и Штрауб (1967) отмечают, что степень отека плаценты зависит от времени нахождения в матке погибшего плода. Обширные отеки амниотической оболочки толщиной до 4 см наблюдали в тех случаях, когда плод извлекали из матки на 3-5-й день после его гибели. Амниотическая жидкость мутная, желто-коричневого цвета. Волосы, кожа и подкожная клетчатка плодов также желтовато-коричневые. В грудной и брюшной полостях плода содержится темно-красная жидкость. На плевре, легких, лимфатических узлах, желчном пузыре, печени можно видеть геморрагии и петехии, а в корковом слое почек обширные очаги некроза.

При менингоэнцефалитах Баренфус и др. (Barenfus et al., 1963) обнаружили негнойный менингоэнцефалит. Наиболее выраженной была инфильтрация паутинной оболочки мозга мононуклеарными клетками. Другие изменения не представляют диагностической ценности.

Диагноз. Эпизоотологические данные, клиническая картина и результаты патологоанатомического вскрытия не дают оснований для постановки диагноза, так как сходные признаки можно обнаружить и при других вирусных респираторных болезнях крупного рогатого скота, которые, как и ринотрахеит, могут протекать атипично, с отклонением от классических форм или в виде смешанной инфекции, затушевывая свойственные тому или иному заболеванию признаки. Тем не менее при дифференциальной диагностике следует принимать во внимание вирусную диарею , злокачественную катаральную горячку, параинфлюэнцу-3.

Окончательный диагноз на инфекционный ринотрахеит устанавливают лабораторными методами исследований, которые включают выделение вируса из патологического материала взятого от больных животных с последующей его идентификацией и обнаружение специфических антител в сыворотках переболевших животных.

Из большого количества серологических методов, предложен ных для лабораторной диагностики болезни, Йорк (Jork, 1968) рекомендует использовать реакцию нейтрализации в культурах клеток, метод иммунофлуоресценции и реакцию непрямой гемагглютинации,

Четем и Грендел (Chetham и Grandell, 1957), Кендрик и др. (1958), Грендел и др. (1959), 3. Ф. Зудилина (1970) считают характерным для ринотрахеита обнаружение в клетках культур тканей, зараженных вирусом, или в эпителиальных клетках больных животных внутриядерных телец-включений типа А Каудри. Эти включения являются специфическими, так как их развитие можно предотвратить обработкой клеток иммунной сывороткой против ринотрахеита. Тельца-включения появляются в культурах клеток в начальном периоде цитопатического действия, в эпителиальных клетках влагалища — через 20, носа и трахеи -через 36, носовых раковин и бронхов — через 48 и 60 часов. Зрелые тельца-включения могут быть круглой, овальной или неправильной формы и окружены светлой зоной.

Следует иметь в виду, что, несмотря на легкость обнаружения телец-включений в инфицированных вирусом клетках, они сравнительно быстро исчезают и поэтому не могут служить надежным диагностическим признаком.

Выделение вируса. Вирус инфекционного ринотрахеита не размножается в организме лабораторных животных, его можно выделить и контролировать процесс размножения только в культурах клеток.

Поскольку вирус малоустойчив и в высокой концентрации содержится не во всех органах, важным условием при проведении вирусологических исследований является правильное взятие и доставка материалов в лабораторию.

От больного животного в период выраженных клинических признаков стерильными тампонами берут слизь или делают соскобы со слизистых оболочек носа, глаз, влагалища или препуция, а при убое животных берут кусочки слизистой носа, носовых раковин, гортани, трахеи, легкого, головного мозга, влагалища И конъюнктивы. При абортах лучше всего брать кусочки плаценты с котиледонами, от абортированных плодов, если нет признаков аутолиза, — кусочки легких, почек, печени, селезенки (Кендрик и Штрауб, 1967). Материалы помещают в стерильные пенициллиновые флаконы с 3-5 мл буферного раствора или питательной среды для культур клеток, содержащие пенициллин и стрептомицин по 500 ЕД мл и в термосе со льдом доставляют в лабораторию.

Дальнейшую подготовку материалов и заражение культур клеток проводят по общепринятой методике.

Для выделения вируса используют культуры первично трипсинизированных клеток почек эмбрионов коров, тестикул бычков, почек телят или их субкультуры. Зараженные культуры клеток инкубируют при 37° в течение 5-7 суток, ежедневно просматривая в микроскоп для обнаружения цитопатических изменений. При высокой концентрации вируса в исследуемом материале цитопатические изменения наступают в первом пассаже. При отсутствии их необходимо провести три последовательных пассажа. Если в третьем пассаже не будет обнаружено изменений, исследование материалов прекращают.

В культуре клеток тестикулов бычков, являющейся наиболее чувствительной i: вирусу ринотрахеита, цитопатические изменения наступают через 36-48 часов по всему монослою и характеризуются округлением клеток. В культурах клеток почек эмбрионов коров и почек телят цитопатические изменения вначале носят очаговый характер, затем распространяются по монослою, могут образовываться симпласты. Потерявшие между собой связь клетки разрушаются и отделяются от стекла. Изменения наблюдают в течение 2-7 суток, в зависимости от концентрации вируса.

Выделенный вирус идентифицируют реакцией нейтрализации в культурах клеток с заведомо положительной сывороткой против ринотрахеита. Подавление цитопатического действия вируса специфической сывороткой при наличии ЦПД в контроле указывает на видовую принадлежность исследуемого вируса.

Сыворотки получают от морских свинок или кроликов, гипериммунизируя их культуральным вирусом. Активные сыворотки, обладающие высокими вирус-нейтрализующими свойствами, можно получить гипериммунизацией телят культуральным вирусом (Бергман, Ханефельд, 1967), а также от отдельных животных, переболевших в естественных условиях.

Диагностику ринотрахеита реакцией нейтрализации можно проводить также исследованием сывороток от переболевших животных с заведомо известным штаммом вируса. Пробы сывороток берут не ранее 15 дней после выздоровления, лучше на 28-й день, так как в это время титр антител достигает максимального уровня (Йорк, 1968). Диагноз считают положительным, если в сыворотках обнаруживают антитела, индекс нейтрализации которых будет не ниже 21g ТЦД50 мл.

Реакция непрямой гемагглютинации по своей чувствительности не уступает реакции нейтрализации, а по простоте постановки превосходит последнюю (Витман и Хетрик, 1965; Н. Н. Крюков и А. Л. Семенихин, 1970). Положительная сторона этой реакции состоит еще и в том, что, применяя ее, можно в короткое время исследовать большое количество сывороток на наличие антител к вирусу ринотрахеита.

Пробы сывороток для исследования получают в те же сроки, что И для реакции нейтрализации. В качестве антигена используют культурный клеточный вирус с титром не ниже 105 ТЦД50 мл, которым сенсибилизируют эритроциты барана, обработанные танином.

Реакцию ставят на досках из органического стекла с лунками, в которые вносят по 0,5 мл двукратные разведения исследуемых сывороток от 1 : 4 до 1 :512 и такое же количество сенсибилизированного антигена. Реакцию учитывают через 3-5 часов. При наличии в сыворотках антител происходит агглютинация сенсибилизированных эритроцитов и оседание их на дно лунок в виде зонтика (реакция положительная).

При помощи этого метода обнаруживают специфический антиген в культурах клеток, зараженных выделенным вирусом, светящийся интенсивно зеленым светом. Антиген обнаруживают через 12-16 часов после заражения, т. е. раньше, чем наступают цитопатические изменения. Он локализуется в одних клетках вокруг мембраны ядра в виде узкой полосы, в других — непосредственно около ядер, а затем в цитоплазме.

По данным Шроера и Естердея (Schroyer и Esterday, 1968), метод иммуно-флуоресценции нельзя применять для обнаружения антигена в клетках, полученных от больных животных, так как в большинстве случаев он дает неспецифические результаты.

Удовлетворительные результаты диагностики инфекционного ринотрахеита дает реакция преципитации в агаровом геле (Estela, 1967). Сыворотки от животных необходимо получать-через 4 недели после переболевания. В качестве антигена используют культуральный вирус, очищенный углеводородом. Линии преципитации появляются через 48 часов инкубирования реагентов во влажной камере при температуре 5°. Г. А. Иванова и др. (1970) получили положительные результаты, используя гипериммунные сыворотки кроликов и антигены в виде культуральной жидкости и нативных материалов, полученных от животных, подозрительных в заболевании инфекционным ринотрахеитом.

Лечение. Химиотерапевтических средств лечения, обладающих вирулицидным действием, нет. Антибиотики (пенициллин, стрептомицин), а также и сульфамидные препараты не действуют на вирус, однако их рекомендуют применять для профилактики осложнений, которые могут быть вызваны секундарной микрофлорой.

При вагинитах, баланопоститах, конъюнктивитах необходимо проводить симптоматическое лечение дезинфицирующими, противовоспалительными растворами, эмульсиями и мазями.

Иммунитет. После естественной или экспериментальной инфекции создается довольно прочный и продолжительный Иммунитет. Полной взаимосвязи между уровнем антител в крови и напряженностью иммунитета нет. Даже низкий уровень антител достаточен для предохранения животного от повторного заражения (Зушек и Чоу, 1961; Йорк, 1968).

Для профилактики болезни применяют аттенуированные живые вакцины, полученные многократным пассированием вируса в различных культурах клеток (Шварц, Йорк и др., 1957; Шварц, Зильбер и др_., 1958; Йорк, Шварц и др., 1958).

Опыты, проведенные в полевых (Браун и Чоу, 1959) и лабораторных (Шроер и Естердей, 1968) условиях, показали, что вакцина вызывает у некоторых животных кратковременное (в течение 12 часов) повышение температуры тела через 1-3 дня после прививки, а также гиперемию слизистой оболочки носа.

Привитые животные могут выделять вирус во внешнюю среду, но не представляют опасности для невакцинированных. После прививки у них образуется достаточно прочный и продолжительный иммунитет. Лиофилизированную вакцину разводят дистиллированной водой и вводят внутримышечно в объем 2 мл.

Вакцину рекомендуется применять телятам в откормочных хозяйствах, неблагополучных по ринотрахеиту или при угрозе заноса инфекции.

Следует иметь в виду, что переболевшие коровы передают потомству через молозиво антитела, которые сохраняются у них в течение 2-4 месяцев. Поэтому вакцинацию телят необходимо проводить после угасания колострального иммунитета, так как пассивные антитела снижают ответную реакцию организма на введение вакцины и, следовательно, препятствуют выработке активных антител (Н. Н. Крюков, Н. М. Белкина, А. Л. Семенихин, 1972). Вакцинация стельных коров приводит к абортам, поэтому их независимо от стадии стельности не прививают (Мак Керчер, 1969).

Для прививки с профилактической целью коров и телят в благополучных по ринотрахеиту хозяйствах с высокой концентрацией животных можно рекомендовать инактивированную вакцину. Опыты по сравнительному испытанию эффективности живой и инакти-вированной вакцин (Зушек и Чоу, 1961) показали, что обе вакцины защитили животных от контрольного заражения патогенным вирусом, хотя уровень нейтрализующих антител при введении инакти-вированной вакцины был примерно в 3 раза ниже.

В ВИЭВ и Тамбовской НПВЛ получены положительные результаты лечения больных и профилактики болезни при применении сыворотки реконвалесцентов. Сыворотки получают от животных через 15-30 дней после выздоровления, вводят подкожно в 2-3 точки в объеме 30-50 мл.

Профилактика и меры борьбы. Основным условием предупреждения инфекционного ринотрахеита является соблюдение ветери-нарно-зоотехнических правил содержания животных, а в случае возникновения болезни своевременное проведение мер борьбы. Мероприятия должны включать: охрану хозяйств от заноса инфекции; своевременную диагностику и проведение профилактических мероприятий; выделение и изоляцию больных животных; проведение комплекса мер, направленных на обезвреживание вируса во внешней среде и повышение резистентности животных.

Для охраны хозяйств от заноса инфекции необходимо не допускать ввода животных из неблагополучных хозяйств. Крупные откормочные хозяйства целесообразно комплектовать животными из закрепленных за ними репродукторных ферм. Вновь поступающих животных содержать в изоляторе для профилактического карантинирования в течение 30 дней. За это время животных подвергают клиническому осмотру и проводят диагностические исследования. Больных животных следует изолировать и сдавать на санитарную бойню.

Если в хозяйстве ранее был установлен ринотрахеит, целесообразно за 4-5 дней до перевода животных из изолятора в откормочные группы привить их вакциной. В репродуктивных хозяйствах запрещают проведение вольной случки.

При транспортировке следят за тем, чтобы животные не переохлаждались. В условиях промышленного содержания тщательно следят за соблюдением нормального микроклимата, условий содержания и кормления животных. Сырость, сквозняки, грязь, повышенное содержание аммиака ослабляют резистентность организма, раздражают слизистые оболочки и тем самым способствуют возникновению и более тяжелому течению болезни.

0

Автор публикации

не в сети 8 часов

admin

0

Все будет хорошо

Комментарии: 147Публикации: 39651Регистрация: 27-02-2009
Добавлено:31 августа 2012 13:30

Рекламные ссылки

Комментировать

Войти с помощью: 
МультиВход

Реклама

Интересный факт

У гекконов нет век, поэтому эти ящерицы вынуждены увлажнять прозрачную мембрану на глазах при помощи языка. Однако перепончатолапые гекконы, которые обитают в пустынях Намибии, наоборот собирают конденсированную на глазах влагу, по сути - росу, из утреннего тумана и утоляют ею жажду.